AKTIVITAS DAN KARAKTERISASI MIKOSIN ANTI Zygosaccharomyces rouxii FNCC 3006 DARI ISOLAT KHAMIR OSMOFILIK ASAL NEKTAR BUNGA DAN MADU

Sovia Nur Janah, Miftahul Ilmi
10.14203/beritabiologi.v21i3.4095
| Abstract views: 479 | Remote views: 114

Abstract

Makanan berkadar gula tinggi (40-70%) dapat terkontaminasi oleh Zygosaccharomyces rouxii yang toleran terhadap tekanan osmotik, asam, alkohol, serta tahan terhadap bahan preservatif makanan. Salah satu cara menghambat pertumbuhan Z. rouxii adalah dengan memberikan mikosin anti Z. rouxii. Tujuan dari penelitian ini adalah untuk mengetahui aktivitas dan karakterisasi mikosin anti Z. rouxii dari isolat khamir osmofilik. Penapisan aktivitas antagonistik dari isolat khamir osmofilik dilakukan dengan metode Colony Picking dan penapisan aktivitas ekstrak kasar dilakukan dengan Disk Diffusion Assay. Zona jernih yang terbentuk diukur untuk menentukan aktivitasnya dengan menggunakan indeks penghambatan (IP). Setelah itu dilakukan pengukuran berat kering sel dan karakterisasi mikosin menggunakan SDS PAGE. Hasil penelitian menunjukkan terdapat 10 isolat khamir osmofilik yang menghasilkan aktivitas antagonistik terhadap Z. rouxii yaitu isolat AP 1, PS 1.1, LW 1.1, BK 3.2, MR 3.2, AP 3, KS 1, dan TL 2.2 yang diisolasi dari madu, isolat BL 8.21 dan BL 8.22 yang diisolasi dari nektar bunga. Aktivitas ekstrak kasar mikosin anti Z. rouxii paling tinggi yaitu isolat LW 1.1 dengan nilai IP 1,28.  Isolat paling efektif untuk menghambat pertumbuhan dari Z. rouxii adalah isolat LW 1.1, diperoleh nilai perbandingan zona hambat dengan berat kering yaitu 442,099. Isolat LW 1.1 menghasilkan anti-Z. rouxii dengan berat molekul antara 12,88 kDa sampai 72,92 kDa. Disimpulkan bahwa isolat LW 1.1 dapat dijadikan sumber penghasil mikosin anti-Z. rouxii yang dapat dimanfaatkan sebagai agen biokontrol dalam produk makanan.

Keywords

Zygosaccharomyces rouxii; khamir osmofilik; mikosin

Full Text:

Remote

References

Alonso, A., I. Belda, A. Santos, E. Navascues, dan D. M arquina., 2014. Advances in the control of the spoilage caused by Zygosaccharomces species on sweet wines and concentrated grape musts. Food Control, 51, pp.129-134.

Al-Qaysi, S. A., H. Al-Haidaeri, Z. A. Thabit, W. H. Abd Al-Razzaq Al-Kubaisy, dan J. Abd Al-Rahman Ibrahim., 2017. Production, characterization, and antimicrobial activity of mycocin produced by Debaryomyces hansenii DSMZ70238. Hindawi International Journal of Microbiology, 2017, pp. 1-9.

Belda, I., J. Ruiz, A. Alonso, D. Marquina, dan A. Santos., 2017. The biology of Pichia membranifaciens killer toxins. Toxins, 9(4).

Chang, S.L., J. Y. Leu, dan T. H. Chang., 2015. A population study of killer viruses reveals different evolutionary histories of two closely related Saccharomyces sensustricto yeast. Mol. Ecol, 24, pp. 4312-4322.

Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI)., 2015. Performance standard for antimicrobial susceptibility testing: twenty-second informational supplement. Clinical and Laboratory Standards Institute. Wayne. pp. 146-156.

El-Banna, A. A., M. A. El-Sahn, dan M.G. Shehata., 2011. Yeast producing killer toxins: an overview. Alexandria Journal of Food Science and Technology, 8(2), pp. 41-53.

Escott, C., J. M. del Freno, I. Loira, A. Morata, dan J. A. Suarez-Lepe., 2018. Zygosaccharomyces rouxii: control strategies and applications in food and winemaking. Fermentation, 4(3), pp. 69.

Fleet. G. H., 2011. Yeast Spoilage of Food and Beverages. In. Kurtzman, C.P. J. W Feel, and T. Boekhout (Eds), The Yeast a Taxonomic Study 5th edition vol 1. Elsevier. London, Burlington, San Diego. pp. 53-56.

Gohel, V., A. Singh, M. Vimal, P. Ashwini, dan H. S. Chhatpar., 2006. Bioprospecting and antifungal potential of chitinolytic microorganisms. African Journal of Biotecnology, 5(2), pp. 54-72.

Gou, W., Y. Liu, X. Zhu, dan S. Wang., 2011. Dielectric properties of honey adulterated with surcrose syrup. Journal of Food Engineering, 107(1), pp. 1-7.

Hatoum R., S. Labrie, and I. Fliss., 2012. Antimicrobial and probiotic properties of yeasts: from fundamental to novel applications. Frontiers in Microbiology, 3, pp. 421.

Hettiarachchi, S. A., S. Lee, Y. Lee, Y. Kwon, M. De Zoysa, S. Moon., E. Jo, T. Kim, D. Kang, S. Heo, dan C. Oh., 2017. A rapid and efficient screening method for antibacterial compound-producing bacteria. Journal of Microbiology and Biotechnology, 27(8), pp. 1441-1448.

Kuanyshev, N., G. M. Adamo, D. Porro, dan P. Branduardi. 2017. Yeast Primer: The Spoilage Yeast Zygosaccharomyces bailii: Foe or Friend ?. Yeast 34:9, pp. 357-396.

Martorell, P., M. Stratford, H. Steels, M. Fernndez-Espinar, dan A. Querol., 2007. Physiological characterization of spolage strins of Zygosaccharomyces bailii and Zygosaccharomyces rouxii isolated from high sugar environment. International Journal of Food Microbiology, 114, pp. 234-242.

Pamminger, T., R. Bekker, S. Himmelreich, C.W. Scheider, dan M. Bergtold., 2019. The nectar report: quantitative review of nectar sugar concentrations offered by bee visited flowers in agricultural and non-agricultural landscape. PeerJ 7, pp. e6329.

Prihartini, M. dan M. Ilmi., 2018. Karakterisasi dan klasifikasi numerik khamir madu hutan dari Sulawesi Tengah. Jurnal Mikologi Indonesia, 2(2), pp. 112-127.

Santos, A. dan D. Marquina., 2004. Ion channel activity by Pichia membranifaciens killer toxin. Yeast, 21(2), pp. 151-162.

Setiady, C. E. B. dan M. Ilmi., 2018. Analisis numerik khamir dari nectar bunga kebun raya baturraden dan pangeran Hargobinangun. Jurnal Mikologi Indonesia, 2(2), pp. 91-99.

Stratford, M., 2006. Food and Beverage Spoilage Yeast. In: A. Querol and G. H. Fleet (Eds), Yeast in Food and Beverages. Springer-Verlag. Berlin. pp. 335-380.

Tokuoka, K., 1993. Sugar and salt-tolerant yeasts. Journal of Applied Bacteriology, 74, pp. 101-110.

DOI: https://doi.org/10.14203/beritabiologi.v21i3.4095

Refbacks

  • There are currently no refbacks.